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用CaCl2处理制备新鲜的大肠杆菌感受态细胞


[ 来源:检验医学在线 | 作者:不详 | 时间:2006-9-5 10:31:33 | 浏览: ]

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1 从37℃培养16~20h的新鲜平板中挑取一个单菌落(如大肠杆菌DH52),或1ml新鲜的16~20h过夜培养物,转到一个含有100mlLB培养基的1L或500ml培养瓶中。
于37℃振摇培养约2~3h(旋转摇床200~300r/min),每隔20~30min测量OD600值≈0.4。
2.在无菌条件下将细菌转移到一个,用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中,冰上放置10~20min;
3 于4℃4000转 /分离心10min,回收细菌细胞;
4 将管倒置1min,以使最后残留的痕量培养液流尽;
5 以10ml用冰预冷的0.1mMCaCl2重悬每份沉淀,放于冰上 , 4℃4000转 /分离心10min,回收细菌细胞;
6 每50ml初始培养物用2ml冰预冷的0.1M CaCl2重悬每份沉定,此时,可以迅速将细胞分装成小份,液氮中冰冻,-70℃贮存备用。
7 用无菌吸头从感受态细胞悬液中取200μl转移到无菌的微量离心管中,加DNA或连接反应混合物(体积≤10μl,DNA≤50ng),轻旋以混匀内容物,冰浴30min;
8 将离心管放到预加温到42℃的水浴中,90s;
9 将混合物快速转移到冰浴中,冷却1-2分钟,加入适当的培养基在37 ℃培养45 分钟,使细胞复苏,并表达质粒所携带的转化基因;
10 将适当体积(每个90mm平板可达200μl)已转化的感受态细胞转移到相应抗生素的平板培养基上。
11 将平板置于室温至液体被吸收 ,倒置平板于37℃培养箱中,12~16h,平板培养,克隆在此期间应该出现,否则转化不成功。


来源:检验医学在线    



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原始作者: 不详 录入时间: 2006-9-5 10:31:33
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